脂质过氧化物(LPO)含量检测试剂盒-脂质过氧化物(LPO)检测试剂盒-上海液质



上海液质是一家拥有12000多种高端成熟型生化elisa土壤植物细胞等试剂盒的生产厂家,并承接生化代测Elisa代测HPLC 检测GC检测GC-MS 检测LC-MS检测ICP-MS检测 、土壤植物动物成分酶活检测等科研检测服务。如有需要立即询购


货号:UPLC-MS-5050 规格:100T/96S 微量法
货号:UPLC-MS-5049 规格:50T/48S 可见分光光度法

产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体 110mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体 11mL×1

2-8℃保存

试剂二

粉剂×2

2-8℃保存

试剂三

液体 4mL×1

2-8℃保存

标准品

液体 1mL×1

2-8℃保存

稀释液

液体 20mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1. 试剂二:临用前取瓶试剂二加入 7mL 蒸馏水,此试剂较难溶,可以在 70℃加热并剧烈振荡以促进溶解,或者通过超声处理以促进溶解。每次用前需检查是否有粉剂析出。用不完的试剂可在 2-8℃中保存一个月。

2. 标准品:为 1000nmol/mL 的标准溶液

产品说明:

脂质过氧化物(lipid hydroperoxide LPO)是不饱和脂肪酸链经自由基或活性氧作用后产生的过氧化物。病理情况下,脂质过氧化反应增强可导致原本低含量的 LPO 升高。LPO 含量升高会对细胞的结构和功能造成损伤, LPO 含量与机体免疫系统和衰老密切相关。

LPO 在酸性条件下加热产生丙二醛(MDA),MDA 与硫代巴比妥酸(Thiobarbituric  acid,TBA)缩合,生成棕红色物质三甲川(3,5,5-三甲基恶唑-2,4-二酮),其*大吸收波长在 532nm,进行比色后可估测样本中 LPO 的含量。

注意:实验之前建议选择 2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵/匀浆器/细胞超声波破碎仪、微量玻璃比色皿/96 孔板、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、组织:按照样本质量(g):提取液体积(mL) 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆;8000g 4℃离心 10min,取上清置冰上待测。

2、细菌或细胞样本:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清,按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液)加入提取液,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 200W,超声 3s,间隔 7s,总时间 3min),8000g 4℃离心 10min,取上清置冰上待测。

3、培养液或其他液体:直接检测。若溶液浑浊则离心后取上清进行测定。

二、测定步骤

1、可见分光光度计/酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 532nm 600nm,可见分光光度计需用蒸馏水调零。

2、标准溶液的制备:现标准液为1000nmol/mL的MDA标准溶液,将标准液用稀释液稀释至20、10、5、2.5、1.25、0.625、0.3125、0.15625nmol/mL备用,具体稀释可参考下表。

序号

稀释前浓度(nmol/mL

标准液体积(µL

稀释液体积(µL

稀释后浓度nmol/mL

1

1000

40

960

40

2

40

500

500

20

3

20

500

500

10

4

10

500

500

5

5

5

500

500

2.5

6

2.5

500

500

1.25

7

1.25

500

500

0.625

8

0.625

500

500

0.3125

9

0.3125

500

500

0.15625

备注:实验中每个标准管需 120µL 标准溶液。

3、在EP 管中按下表步骤加样:将混合液在 45℃(植物样本) 100℃其他样本水浴 60min 后(标准管在两个温度水浴均可),置于冰浴中冷却,8000g,常温,离心 10min。吸取 200μL 上清液于微量玻璃比色皿或 96 孔板中,测定各样本在 532nm 600nm 处的吸光度。分别计算 ΔA=A532 测定-A532 对照-A600 测定-A600 对照),ΔA 标准=A532 标准-A532 空白-(A600 标准-A600 空白)(标准曲线,空白管和对照管只需做 1-2 次)

三、LPO 含量的计算

1. 根据标准管的浓度(x,nmol/mL)和吸光度 ΔA 标准(y,ΔA 标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将 ΔA(y,ΔA)代入公式计算样本浓度(x,nmol/mL)

2. 按样本蛋白质浓度计算

LPO 含量(nmol/mg prot)= x×V 样÷(Cpr×V 样)= x÷Cpr

3. 按样本质量计算

LPO 含量(nmol/g  质量)= x×V 样÷(W×V 样÷V 样总)= x÷W

4. 按细菌/细胞数量计算

LPO 含量(nmol/104cell)= x×V 样÷(V 样÷V 样总×细胞数量(万个))= x÷细胞数量(万个)

5. 按照液体样本体积计算

LPO 含量(nmol/mL)= xV 样:加入样本体积,0.12mL,V 样总:提取液体积,1mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g。

注意事项:

1. 待测液如果有密集小气泡,建议静置 20min 左右等待气泡消失再测,以免影响测定结果,如果有少量气泡可以通过低速离心或轻磕等方式来消除。

2. 待测液如果尚未澄清,可吸取上清液后再次离心。

3. 为防止水浴 60min 过程中水分散失,建议使用螺旋管或用封口膜给 EP 管缠口。

4. 如果用高温助溶试剂二,需要待其冷却至室温后再使用。

5. 如果测定吸光值过低或接近空白,适当延长反应时间或加大样本量后,重新测定。如果吸光值过大或超过检测范围(A532>1.5 或者 ΔA>1.5 时),建议将样本适当稀释后进行测定。注意同步修改计算公式。


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